Инфекционный бронхит кур диссертация

Номер работы: 362368

Без учета скидки. Вы получаете файл формата pdf

Вы получаете первые страницы диссертации в формате txt

Просмотр 1 страницы = 3 руб

Оглавление диссертации:

2.1. Инфекционный бронхит кур

Инфекционный бронхит кур (ИБК) является высококонтагиозным заболеванием, которое наносит значительный экономический ущерб птицеводческой промышленности многих стран. Заболевание впервые было зарегистрировано в 1931 году в США в Северной Дакоте, а этиологический агент впервые был выделен в 1937 г (53). В нашей стране изучение ИБК было начато в 1950-е годы, когда на крупных птицеводческих комплексах яичной яичного направления (15). Это, у цыплят вероятно, стали было наблюдаться связано с респир

В 1933 году Bushnell и Brandly, изучая респираторную болезнь цыплят, впервые выяснили, что возбудителем ее является фильтрующийся вирус (60). Дальнейшие исследования Beach и Schalm в 1936 году показали, что этот этиологический агент отличается от ларинготрахеита, открытого ранее (51). Инфекционный бронхит кур вызывается РНК- содержащим вирусом сем. Coronaviridae, рода Coronavirus. Вирионы представляют собой частицы сферической формы, диаметром 80-160 нм, имеют липопротеиновую оболочку

2.1.3. Антигенная вариабельность вируса инфекционного бронхита кур Первым штаммом вируса ИБК был Beaudette, который был выделен на развивающихся куриных эмбрионах (53). Этот штамм и выделенный в 1941 году в США штамм Mass 41 обладали сходными антигенными 9 свойствами и были классифицированы в первый серотип ИБК Massachusetts (Mass). В результате некоторое время считалось, что вирус ИБК однороден по своей антигенной структуре (172). Но уже в 1958 году исследования Hofstad и соавт. (101) показа

2.1.4. Антигенные свойства пепломерного белка S 1 вируса ИБК Сравнение аминокислотных последовательностей вирусных белков у разных штаммов вирусов используется для локализации консервативных * доменов белков, которые могут быть значимы для их структуры и функции, а также для идентификации эпитопов, вовлеченных в нейтрализацию вируса, и изучения антигенного дрейфа. Гликопротеин S1 служит мишенью для серотипоспецифических и вируснейтрализующих определили с гипервариабельный * Последовательность

2.1.5. Характеристика изолятов вируса ИБК, выделенных на ^ птицефабриках России Хотя заболевание впервые было зарегистрировано в 1931 году в США, в нашей стране изучение ИБК было начато в 1950-е годы, когда на крупных птицеводческих комплексах яичного направления у цыплят стали наблюдаться респираторные нарушения, а у взрослой птицы отмечалось снижение яичной продуктивности. Основными научными центрами по ^ изучению ИБК в России стали Московская ветеринарная академия (МВА), Всесоюзный институ

2.2.1 Патогенез и эпизоотология инфекционного ларинготрахеита птиц Инфекционный ларинготрахеит птиц (ИЛТ) — контагиозная вирусная болезнь кур, индеек, цесарок, фазанов, характеризующаяся поражением слизистых оболочек верхних дыхательных путей и глаз. Заболевание впервые было описано в 1925 году, Бодеттом в а этиологический агент выделен как ларинготрахеит, 1937 (52). Его идентифицировали инфекционный бронхит и дифтерия птиц. В настоящее время ИЛТ встречается повсеместно во всех странах мира.

2.2.2.Классификация и физико-химические свойства вируса ИЛТ Возбудителем ИЛТ является фильтрующийся вирус, открытый Бодеттом, который относится к семейству Herpesviridae и подсемейству # Alphaherpesvirinae (60). Таксономически вирус идентифицируют как Gallid herpesvirus 1. Нуклеокапсид вируса ИЛТ имеет гексагональную форму, диаметром 80-100 нм, с икосаэдрической симметрией и состоит из 162 удлиненных полых капсомеров. Полная вирусная частица диаметром 195трипсинизированнои культуре печени кур

Репликация вируса ИЛТ сходна с той, что имеет место у других • вирусов, относящихся к роду с Alpfaherpesvirus, прикрепления таких к как вирус псевдобешенства и вирус простого герпеса (175,176). Инфекция начинается вируса клеточным рецепторам и последующим проникновением вируса путем виропексиса. В процессе виропексиса клетками могут захватываться как частицы с оболочками, так и без них. Благодаря оболочке, возможно, облегчается адсорбция вируса на клетках, но ее присутствие не является обязат

Ларинготрахеит может быть точно диагностирован по клиническим * симптомам только в случае острой формы заболевания с высокой смертностью и отхаркиванием крови. Однако сходные клинические симптомы и повреждения могут присутствовать и при других респираторных заболеваниях домашних птиц. Поэтому диагноз на ларинготрахеит ставится на основании обобщения эпизоотологических данных, клинических признаков и результатов лабораторных исследований. Лабораторная диагностика ИЛТ включает выделение вируса

2.5. Дифференциация вакциннных штаммов ИЛТ от полевых * изолятов Защита цыплят от заражения вирусом ИЛТ осуществляется путем создания высокого уровня трансовариального иммунитета у цыплят раннего возраста иммунизацией ремонтного молодняка кур инактивированными вакцинами и применением живых вирусвакцин по мере снижения титров пассивных Ф антител (80). Применение живых вакцин обеспечивает достаточно надежную защиту от заболевания ИЛТ, однако существует ряд проблем: распространение вакцинного ви

В работе использовались следующие ферменты: Р1-1К-зависимая Д1НК0 полимераза (ревертаза) вируса миелобластоза птиц (Promega), Taq ДНКполитмераза (Promega), полинуклеотидкиназа (Promega).

В работе использовались две системы праймеров: для вируса ИБК для индикации генома вируса ИБК (на консервативную область UTR ^ (UTR1-4); для штаммовой дифференциации изолятов (на вариабельную область гена S1(S1-S4) (структура праймеров рассчитана Бочковым Ю.А. (4)); для вируса ИЛТ две системы праймеров на ген тимидинкиназы ((ТК1-2)структура приведена в статье Keller C.Letal.(117)); щ на область инвертированных повторов, ограничивающих ген ICP4 ((1СР1-5)расчитана нами). Расчет вирусспецифическ

Очистку и концентрирование материала вируса ИБК проводили методом жидкость центрифугирования в градиенте плотности хлористого цезия. В качестве вируссодержащего использовали аллантоисную куриных эмбрионов. Заражение КЭ проводили в аллантоисную полость, заражающая доза составляла — 2 Ig ЭИД50/МЛ. Схема очистки и концентрирования включала следующие этапы: 1. Аллантоисную жидкость, собранную через 72 часа после инфицирования 9-дневных КЭ различными штаммами и изолятами вируса 1/1БК, осветляли ц

Читайте также:  Кашель при бронхиальной астме

3.2.2. Очистка и концентрирование вируса ИЛТ Очистку и концентрирование вируса ИЛТ проводили методом центрифугирования через слой сахарозы. В качестве вируссодержащего материала использовали 30% суспензию хориоаллантоисных оболочек • (ХАО) инфицированных КЭ. Схема очистки и концентрирования включала следующие этапы: 1. 30% суспензию ХАО готовили на дистиллированной воде, затем при комнатной ее дважды замораживали при -ZO’^C и оттаивали температуре. Осветляли суспензию центрифугированием при

В качестве 9-10 чувствительных дневные КЭ. тест-объектов Применяли для определения препаратов концентрации ежедневно десятикратных инфекционной использовали активности полученных вируссодержащих метод последовательных Инкубировали разведений. Для испытания каждой при 37°С в течение использовали не менее 4 эмбрионов, для контроля — не менее двух. эмбрионы 7 дней, овоскопируя. При титровании вакцинного штамма ЦНИИПП кл.НТ вируса ИЛТ эмбрионы инкубировали при 32° С. Гибель эмбрионов в теч

Контроль проводили в соответствии с ГОСТ 28085-89. Для этого производили высевы контрольной меланжированнои пробы на питательные среды МПА, МПБ, МППБ под вазелиновым маслом и Сабуро (среды производства ВНИИЗЖ). Использовали по 3 пробирки кахщой из указанных сред для посева и по одной пробирке оставляли в качестве контроля. 61 Объем посева в каждую пробирку составлял 0,1 см^. Засеянные контрольные пробирки со средами (кроме Сабуро) выдерживали при температуре 37°С в течение 14 суток. Контро

Для 4,5 исключения контаминации PPLO-бульона вирусологических (производства образцов микоплазмами проводили высевы по 0,5 мл в 3 пробирки, содержащие по см’ стандартного ВНИИЗЖ) (20% лошадиной сыворотки, 1,47% PPLO основы, 2,5% аутолизата дрожжей, 0,5% глюкозы, 0,25% аргинина, 0,01% никотинамида динуклеотида и L-цистеина, 0,05% ацетата таллия, индикатор — феноловый красный), одну пробирку оставляли незасеянной в качестве контроля. Инкубацию проводили при температуре 37°С в течение 72 часов.

Для обнаружения антигена вирусов ИБК и ИЛТ в вируссодержащих суспензиях применяли блокирующий вариант ИФА. Реакцию проводили по разработанной ранее схеме, описанной в литературе (135). Реакцию проводили в два этапа:

2) твердая фаза. Вначале проводили сенсибилизацию полистиролового планшета антигеном в разведении 1:50 в течение 18 часов при 4°С. Затем щ блокировали 10% лошадиной сывороткой в течение 1 часа при 25°С с последующей 4-краТной отмывкой лунок планшета. Пр

Выделение суммарной РНК и ДНК проводили по модифицированному методу Грибанова и соавт. (11) с использованием стекловолокнистых фильтров GF/F (Whatman, Англия). Для исследования полевых проб на наличие генома вируса ИБК готовили 20% суспензию органов (легкие, трахеи, почки, кишечник) в STE буфере (0,01 М Трис-НС1; 0,1 М NaCI; 1 мМ EDTA. рН 7,2 7,4), лиофилизированные вакцинные препараты разводили бидистиллированной водой. Для выделения РНК к 50 мкл исследуемой пробы добавляли 0,5 мл 4 М раство

3.2.10. Прямое секвенирование амплифицированных фрагментов KflHK Очистку амплифицированных в ПЦР фрагментов кДНК проводили с использованием стекловолокнистых фильтров GF/F. Для этого раствор кДНК из-под масла отбирали, смешивали с 0,45 мкл 4 М ГГЦ, инкубировали в течение 15 минут при комнатной температуре, а затем пропускали через фильтр GF/F с помощью вакуумного насоса. Сушили фильтры центрифугированием в течение 1 мин. на центрифуге Eppendorf, затем элюировали фрагменты кДНК с фильтров дист

3.3). Для выявления вариабельных участков геномов вирусов ИБК и ИЛТ использовали программу «SQ-MAX», разработанную (ВНИИЗЖ)(16). Зинковским Ю.В. выборе оптимальных для праймеров участков генома использовали программы «ALIGN» (Scientlfic& Educational Software), «OLIGO» Для сравнения установленных нуклеотидных последовательностей и предсказания филогенетических отношений штаммов вирусов ИБК и ИЛТ использовали пакет прикладных программ «SeqPro

Гипериммуиные специфические сыворотки крови кроликов против вирусов ИБК и ИЛТ получали при введении животным препаратов вирусов с инфекционной активностью не менее 6,0 Ig ЭИДБО/МЛ, очищенных по приведенным выше схемам. Концентрация общего белка в препаратах составляла около 100 мкг/мл. Заражение проводили трижды с интервалом в 21 день

введением суспензии очищенного вирусного препарата в смеси 1:2 с синтетическим маслом-адъювантом ISA-70 в три точки — в обе лапы в/м и в холку п/к. При пе

Реакцию нейтрализации для вирусов ИБК и ИЛТ проводили на куриных эмбрионах, а также в органной культуре трахеи по стандартной методике (38). Перед постановкой РН предварительно определяли титр антител в полученных сыворотках при нейтрализации ими специфического действия гомологичных вирусов, а также определяли титры используемых вирусов. Для постановки РН на КЭ использовали следующие компоненты: типоспецифические сыворотки ко всем эталонным серотипам, нормальные сыворотки (не содержащие ант

Для постановки реакции использовали раствор 1% агарозы с 2% ПЭГ, содержащий 8% NaCi и 1% азида натрия в дистиллированной воде. 10 мл расплавленной агарозы помещали в чашки Петри диаметром 10 см. В застывшей агарозе вырезали лунки. Расстояние от центральной лунки до периферических составляло 0,5 см. Центральную лунку заполняли гипериммунной сывороткой, 6 окружающих лунок разведениями исследуемого вируса. Исследуемые препараты, содержащие вирус, концентрировали по разработанной нами методике,

проб Инфекционный бронхит кур наносит серьезный экономический ущерб птицеводческим хозяйствам. Основной причиной проявления заболевания у вакцинированных птиц считается появление изолятов вируса ИБК, антигенно отличающихся от используемых вакцинных штаммов (5,105). За период с 1999 -2004 гг. было проанализировано более 250 проб из 149 птицехозяйств. Причиной направления материалов на исследование в основном являлось наличие у птицы респираторных симптомов, снижение яйценоскости или проявление

Читайте также:  При бронхите можно ли ставить перцовый пластырь

3.2.12). Активность полученнных сывороток определяли

Инфекционный ларинготрахеит птиц (ИЛТ) широко распространенное острое респираторное заболевание среди птиц отряда куриных (кур, индеек, фазанов, цесарок). После острой фазы инфекции может наступить латентный материала ^ вируса в ДНК период клеток с сохранением ганглия генетического нерва. тройничного Вакцинопрофилактика ИЛТ в птицехозяйствах осуществляется путем применения живых вакцин, что вызывает персистенцию вируса в организме птицы в течение длительного времени и может при определенных

либо синтезировался фрагмент размером 518 п.н., если вирус относился к первой генетической группе, # Следующим этапом нашей работы было изучение биологических свойств вирусов ИЛТ. Исследовали способность к репродукции в КЭ, оценивали характер бляшек, образующихся на ХАО, изучали летальность для эмбрионов (в процентах), определяли инфекционный титр вакцинных штаммов и изолятов вируса ИЛТ титрованием на КЭ, а также оценивали степень нейтрализации гомологичными и гетерологичными сыворотками не

4.9. Идентификация выделенных вирусов средствами электронной микроскопии, в реакциях нейтрализации, РДП и ИФА Электронномикроскопическое исследование полученных нами вируссодержащих препаратов вируса ИЛТ проводили совместно с д.б.н. Пономаревым А.П., ведущим н. сотр. лаборатории болезней крупного рогатого скота. Для обнаружения вируса под электронным микроскопом осветленную фильтрованием вируссодержащую суспензию центрифугировали при 12000 g в течение 30 минут, осадок растворяли в воде в 1/3

Патоморфология и дифференциальная диагностика инфекционного бронхита кур (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Историческая справка
    • 1. 2. Этиология
    • 1. 3. Экономический ущерб
    • 1. 4. Эпизоотология
    • 1. 5. Клинические признаки
    • 1. 6. Патогенез
    • 1. 7. Патоморфологические изменения
    • 1. 8. Диагностика
    • 1. 9. Профилактика и меры борьбы
  • 2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Материалы и методы
    • 2. 2. Краткие эпизоотологические и клинические данные
    • 2. 3. Патоморфологические изменения у цыплят 20 — 25 дневного возраста при спонтанном инфекционном бронхите кур
    • 2. 4. Патоморфологические изменения у кур-несушек при спонтанном инфекционном бронхите кур
    • 2. 5. Патоморфологические изменения у куриных эмбрионов при экспериментальном воспроизведении инфекции
    • 2. 6. Дифференциальная диагностика 77 ОБСУЖДЕНИЕ СОБСТВЕННЫХ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • ВЫВОДЫ 103 РЕКОМЕНДАЦИИ ДЛЯ ПРАКТИКИ
  • СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Основу современного птицеводства составляют промышленные птицеводческие хозяйства, одной из особенностей которых является то, что на ограниченной территории содержится большое количество птицы. Это создает особую опасность для возникновения инфекционных заболеваний и быстрого распространения их.

Среди инфекционных болезней, вызывающих поражение органов дыхания птиц, не маловажное значение имеет инфекционный бронхит, на долю которого приходится 22,1% от всех респираторных заболеваний.

В клиническом проявлении болезней поражающих органы дыхания птиц, менее изученным является инфекционный бронхит кур (ИБК). Это заболевание наносит огромный экономический ущерб промышленному птицеводству за счет снижения продуктивности кур, снижения качества скорлупы яиц и повышения потребления корма на единицу продукции.

Изучению ИБК посвящено большое количество исследований, в которых достаточно подробно освещены вопросы этиологии, эпизоотологии, профилактики (Свинцов П.М., 1954- , , Токарских В., 1995- , 1997- , , Фролов С. ВД998- Сандин М., 1999- , 2000- Scolari А., 1990- Arvidson V., Tannock G.A., Senthilselvan A., Zerbes М., 1990- Montgomery R.D., Boyle C.R., Maslin W.R., Magee D.L., 1997- Dhinakar Raj G., Savage C.E.- Jones R.C., 1997).

Но в литературе имеются скудные данные по вопросу патоморфологиче-ских изменений при инфекционном бронхите кур у эмбрионов и кур различных возрастных групп. Также слабо освещена дифференциальная диагностика инфекционного бронхита кур от сходных заболеваний.

Таким образом, изучение патоморфогенеза инфекционного бронхита кур является актуальной задачей современного птицеводства.

Цель работы: изучить патоморфологические изменения при спонтанном заражении и экспериментальном воспроизведении инфекционного бронхита кур.

1. Изучить эпизоотологическую обстановку в птицеводческих хозяйствах Саратовской области по инфекционному бронхиту кур.

2. Изучить патоморфологию при спонтанном возникновении инфекционного бронхита кур у цыплят.

3. Изучить патоморфологию при спонтанном возникновении инфекционного бронхита у взрослых кур.

4. Проследить морфологические изменения при экспериментальном воспроизведении болезни от момента заражения до момента замирания эмбрионов.

5. Разработать критерии дифференциальной диагностики инфекционного бронхита кур от сходных заболеваний.

Научная новизна работы

1. Впервые подробно описаны патоморфологические изменения у эмбрионов, цыплят и кур при инфекционном бронхите кур.

2. Разработаны критерии дифференциальной диагностики инфекционного бронхита кур от сходных заболеваний.

Практическая значимость работы

Установленные патоморфологические изменения у эмбрионов, цыплят, кур-несушек, характерные для инфекционного бронхита кур, следует использовать для диагностики данного заболевания [«https://sinp.com.ua», 10].

Реализация результатов исследований

Результаты исследований доложены и обсуждены: на научной конференции профессорско-преподавательского состава и аспирантов СГАУ им. по итогам научно-исследовательской работы за 2000 год (5−9 февраля 2001 г.) — на научной конференции профессорско-преподавательского состава и аспирантов СГАУ им. по итогам научно-исследовательской работы за 2001 год (4−8 февраля 2002 г.) — на межкафедральном совещании института ветеринарной медицины и биотехнологии СГАУ им. (25 апреля 2002 г.).

Публикация результатов исследований

Основные положения диссертации доложены в четырех опубликованных работах.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1. Инфекционный бронхит кур — широко распространенное инфекционное заболевание кур в птицеводческих хозяйствах. Данное заболевание установлено в двух из пяти обследованных птицефабрик Саратовской области. Заболевание чаще встречается в зимне-осенний период.

2. Клинические признаки инфекционного бронхита кур зависят от возраста птиц. Основным симптомом заболевания у цыплят является расстройство органов дыхания: кашель, чихание, хрипы, истечение из носа. Это сопровождается угнетением, снижением аппетита и прироста живой массы птицы. О наличии инфекционного бронхита у взрослых кур можно судить по снижению яичной продуктивности, изменению цвета и поверхности скорлупы яиц.

Читайте также:  Какой лучше грудной сбор при бронхите

3. Патоморфологические изменения у спонтанно зараженных цыплят характеризуются катаральным, катарально-геморрагическим серозно-фибринозным трахеитом и бронхитом, серозной пневмонией и аэросаккулитом, подагрическим нефритом. Гистологически в слизистой оболочке трахеи и бронхов выявляется отек, резкое полнокровие, стазы, очаговые кровоизлияния и тромбоз сосудов. В почках — зернистая дистрофия эпителия проксимальных канальцев, в дистальных канальцах некроз эпителия и скопление в них моче-кислых солей (мочекислый диатез).

4. Инфекционный бронхит у взрослых кур проявляется серозным ринитом и трахеитом, подагрическим нефритом, желточный перитонитом, недоразвитием и деформацией яичника и сальпингитом.

5. У эмбрионов отмечаются отставание в росте, скручивание их в клубок, гипотрофия внутренних органов. При гистологическом исследовании обнаруживают катаральный ринит, трахеит, серозную пневмонию, отек миокарда, зернистую дистрофию эпителия почечных канальцев, гастрит, энтерит.

6. У цыплят, кур-несушек и эмбрионов выявлено иммунодефицитное состояние центральных и периферических органов иммунной системы в виде гипоплазии тимуса, фабрициевой бурсы, селезенки, лимфофолликулов кишечника.

7. На основании собственных результатов исследований и имеющихся данных литературы разработана дифференциальная диагностика инфекционного бронхита кур от сходных по клинико-анатомическим признакам болезней птиц, представленная в виде таблицы, что имеет большое значение для использования этих критерий в практике ветеринарии и указывает на необходимость применения иммуномодуляторов для птиц в неблагополучных по ИБК птице-хозяйствах.

Рекомендации для практики

На основании выполненных нами исследований рекомендуется:

1. Проводить раннюю диагностику инфекционного бронхита кур по характерным патоморф о логическим признакам, установленным у спонтанно заболевших цыплят и взрослых кур.

2. При постановке диагноза учитывать разработанные критерии дифференциальной диагностики инфекционного бронхита кур от заболеваний со сходными патоморфологическими признаками: инфекционного ларинготрахеи-та, гриппа кур, респираторного микоплазмоза, болезни Гамборо, гемофилёза, ньюкаслской болезни, оспы, синдрома снижения яйценоскости, колисептице-мии, авитаминоза А.

3. При проведении профилактических и химиотерапевтических мероприятий учитывать иммунодепрессивное влияние вируса инфекционного бронхита кур на организм птиц, применять иммунокорректоры, улучшать условия кормления и содержания.

4. Новые сведения по патоморфологии инфекционного бронхита кур использовать в гистологической диагностике в ветеринарных лабораториях по болезням птиц, включить в программу по подготовке ветеринарных врачей в ветеринарных Вузах и факультетах.

Этиология. Возбудитель — вирус сем. Coronoviridae, Размер вирусных частиц 80—250 нм, вирус чувствителен к эфиру и хлороформу, большинство его штаммов инактивируется при t 56 °С в течение 10—15 мин. Вирус погибает под действием 3%-ного горячего р-ра едкого натра в течение 3 ч, осветлённого [осветленного] р-ра хлорной извести с содержанием 6%-ного активного хлора — 6 ч, 0,5%-ного р-ра формальдегида — 3 ч. Размножается на куриных эмбрионах. В антигенном отношении различают 2 типа вируса.

Эпизоотология. К И. б. п. более восприимчивы цыплята до 30-суточ-ного возраста. Осн. источник возбудителя инфекции — больные куры и цыплята, выделяющие вирус с секретом дыхательных органов, помётом [пометом] . Установлено вирусоносительство кур до 12 мес. Заражение происходит гл. обр. аэрогенным путём [путем] . Возможна передача вируса через яйца. Куры способны передавать потомству антитела, которые предохраняют птицу от заражения в первые 10—15 сут жизни.

Течение и симптомы. Инкубационный период 2—6 сут. У цыплят болезнь проявляется одышкой, чиханием, опуханием подглазничных синусов, конъюнктивитом, исхуданием; болезнь продолжается от 6 до 18 сут. У взрослых птиц после скрытого переболевания понижается яйценоскость. Переболевшие куры несут дефектные яйца.

Патологоанатомические изменения. В трахее и крупных бронхах характерны кровоизлияния. От 5 до 50% больных кур откладывают яйца с известковым наростом, ок. 25% — с мягкой и 12% — с тонкой скорлупой. У 20% больных кур белок яиц содержит в результате сальпингита дифтеритические массы.

Диагноз в условиях х-ва ставят на основании эпизоотол., клинич. и патологоанатомич. данных. Для окончательной постановки диагноза необходимы лабораторные исследования (выделение и идентификация вируса). И. б. п. дифференцируют от ларинготрахеита, оспы, ньюкаслской болезни, респираторного микоплазмоза, инфекц. насморка.

Профилактика и меры борьбы. В нек-рых странах для специфич. профилактики И. б. п. используют инактивированные и живые вакцины. Последние применяют с большой осторожностью, т. к. они могут провоцировать в х-вах респираторный микоплазмоз и колисептицемию. Возраст прививаемой птицы определяют в зависимости от эпизоотич. ситуации х-ва. Напр., если болезнь регистрируется у молодняка, то прививки начинают в 10—20-суточ-ном возрасте, если поражены взрослые куры, то прививают цыплят с 60-суточного возраста 3 раза с интервалом 20 сут. Профилактика И. б. п. сводится к изолированному выращиванию и содержанию разновозрастных групп птиц с соблюдением температурно-влажностного режима в птичниках. При возникновении болезни необходимо провести строгую выбраковку больной и подозрительной по заболеванию птицы. Яйца от неблагополучной группы птиц используют только для пищевых целей. По окончании яйцекладки птицу неблагополучного птичника необходимо сдать на птицебойню. Птичники дезинфицируют 2%-ным р-ром формальдегида; клетки и инвентарь — горячим 3%-ным р-ром едкого натра. Для дезинфекции воздуха в птичнике в присутствии птицы можно применять пары йода, молочной к-ты, хлора.

Лит.: Эпизоотология, под ред. Р. Ф. Сосова, 2 изд., М., 1974; Бессарабов Б. Ф., Болезни кур, М., 1974.

Читайте также:
Adblock
detector